Microbiología e Higiene de los Alimentos

En esta página hay una infografía sobre la Shigelosis, en la cual viene muy bien explicada toda la enfermedad. https://www.saludcastillayleon.es/ciudadanos/es/seguridadalimentaria/datos-claves-prevencion-riesgos-microbiologicos/infecciones-bacterias/shigelosis

MATERIAL A UTILIZAR: - Papel de filtro. - Microscopio. - Asa de siembra. - Mechero de alcohol. - Esporas de la seta. - Porta y cubreobjetos. - Pipeta Pasteur. - Azul de metileno. PASOS A SEGUIR: 1. Hacemos el mismo procedimiento que en la esporada 2. Lo único que este caso echamos azul de metileno. 2. Lo enfocamos con los distintos objetivos y se pudo ver esto:  Los puntos son las esporas.

MATERIAL A USAR: - Papel de filtro. - Microscopio. - Mechero de alcohol. - Asa de siembra. - Pipeta Pasteur. - Esporas de las setas. - Agua destilada. - Vidrio de reloj. - Porta y cubreobjetos.   PASOS A SEGUIR: 1. Lo primero de todo esterilizamos el asa de siembra con el mechero de alcohol. 2. Cogemos una muestra de las esporas con el asa de siembra y la ponemos en el portaobjetos. 3. Echamos agua destilada en el vidrio de reloj y con una pipeta Pasteur cogemos un poco. Echamos una gotita pequeña en la muestra y ponemos el cubreobjetos. 4. Lo llevamos al microscopio y con los distintos objetivos se pudo ver: Los puntos son las esporas.

MATERIAL A UTILIZAR: - Papel de filtro. - Microscopio. - Agua destilada. - Seta Coprinus comatus. - Vaselina. - Mechero de alcohol. - Vidrio de reloj. - Pinzas. - Asa de siembra. - Porta excavado. - Cubreobjetos. - Pipeta Pasteur.   PASOS A SEGUIR: 1. Cogemos con las pinzas una muestra muy pequeña de la seta y la ponemos en el vidrio de reloj junto con un poco de agua destilada. 2. La disolvemos moviéndolo con el asa de siembra y con la pipeta Pasteur echamos una gota muy pequeña en el centro del porta excavado. 3. Untamos los bordes del cubreobjetos con vaselina y lo ponemos sobre el porta. 4. Ponemos la muestra en el microscopio y con los diferentes objetivos se pudo ver: Los puntos pequeños son las esporas y las rayas son las láminas del carpóforo.

MATERIAL A UTILIZAR: - Papel de filtro. - Vaso de precipitados. - Papel de color. - Setas. - Agua destilada. PASOS A SEGUIR: 1. Echamos agua destilada en el vaso de precipitados. 2. Cortamos un trozo de papel de color y le hacemos un agujero en el medio. 3. Ponemos el papel de color encima del vaso de precipitados y en el agujero introducimos la seta. 4. La dejamos todo un día y al día siguiente, con la humedad se verán las esporas.

En este enlace se encuentra el trabajo de investigación de las setas que hubo en clase hace unos días. https://www.scribd.com/document/391323079/Setas

Tema 2 . Microbiología básica. 1. Importancia de los microorganismos. 2. Concepto de microbiología. 3. Clasificación de los microorganismos. 4. Características de los microorganismos. 5. Virus. 6. Parásitos. 6.1. Clasificación tradicional. 6.2. Clasificación taxonómica. 6.3. Morfología de un protozoario.  6.4. Características de los protozoarios. 6.5. Morfología de un helminto. 6.6. Características de los helmintos. 6.7. Morfología de un artrópodo. 6.8. Ciclo biológico. 6.9. Vías de transmisión. 6.10. Enfermedades parasitarias del hombre: Fasciola hepática, anisakis, taenia solium, garrapata. 6.11. Alimentos implicados en infecciones parasitarias. 6.12. Tratamiento y prevención. 7. Especie. 7.1. La especie: ¿realidad o idea?. 8. Hongos. 8.1. Clasificación tradicional de los hongos. 8.2. Clasificación actual de los hongos. 8.3. Clasificación actual del reino Fungi. 8.4. Morfología de los hongos. 8.5. Diseminación

MATERIAL A UTILIZAR. - Papel de filtro. - Microscopio estereoscópico. - Babosa. - Placa de Petri. PASOS A SEGUIR: 1. Preparamos todos los materiales. 2. Cogemos la babosa, la ponemos en una placa de Petri y la llevamos al microscopio estereoscópico. Pudimos ver esto:

Tema 1:   Generalidades de la microbiología de los alimentos. - Concepto. - Disciplinas relacionadas. - Clasificación de los microorganismos. - Campo de acción.

MATERIAL A UTILIZAR: - Microscopio. - Pinza. - Papel de filtro. - Mechero de alcohol. - Asa de siembra. - Portaobjetos. - Tomate y nectarina. - Pipeta Pasteur. - Azul de metileno. - Paralelas. - Agua destilada. PASOS A SEGUIR. 1. Lo primero que hacemos es esterilizar el asa de siembra y el portaobjetos con el mechero de alcohol.  2. Cogemos con el asa de siembra una muestra de tomate y la ponemos en el portaobjetos. Después la llevamos al microscopio y la enfocamos. Vimos esto: 3. Después repetimos el proceso anterior pero, en este caso, con una muestra de nectarina. 4. Hacemos una tinción con azul de metileno. Para ello tenemos que poner la muestra en unas paralelas, echarle unas gotitas de azul de metileno y dejarlo que se seque durante unos 5 minutos aproximadamente. Pasados los 5 minutos lo lavamos con agua destilada pero sin cargarnos la muestra, es decir, con cuidado. Pudimos observar esto:

Mientras que los alumnos estuvimos haciendo la anterior práctica de los glóbulos rojos (práctica 8), el profesor nos puso en un microscopio bacterias con una tinción negativa de tinta china. Esto es lo que se pudo ver:

MATERIAL A UTILIZAR: - Papel de filtro. - Microscopio. - Lanceta. - Pinzas. - Cubre y porta objetos. - Aceite de inmersión - Mechero de alcohol. - Alcohol. PASOS A SEGUIR: 1. Lo primero que tenemos que hacer es limpiar el portaobjetos con alcohol y esterilizarlo con el mechero de alcohol. 2. Nos lavamos las manos y los pinchamos con la lanceta para obtener la sangre y posteriormente poder ver los glóbulos rojos. Ponemos varias gotas en el portaobjetos y cubrimos la muestra con el cubreobjetos. 3. Lo llevamos al microscopio y lo enfocamos con los distintos objetivos. Con el de 100X echamos aceite de inmersión y, pudimos ver esto: Pudimos observar como algunos de ellos se movían.

MATERIAL A UTILIZAR. - Microscopio. - Papel de filtro. - Mechero de alcohol. - Azul de metileno. - Pinzas. - Asa de siembra. - Portaobjetos. - Yogur de fresa de Danone. - Paralelas. - Agua destilada. - Pipetas Pasteur. PASOS A SEGUIR: 1. Esterilizamos el asa de siembra y el portaobjetos. 2. Cogemos el portaobjetos con las pinzas y con el asa de siembra ponemos un poco de muestra encima. 3. Ponemos la pinza junto con el portaobjetos y la muestra en unas paralelas. Cogemos azul de metileno y con una pipeta Pasteur echamos 1 o 2 gotas en la muestra y lo dejamos secar unos 5 minutos aproximadamente. 4. Una vez han pasado los 5 minutos lavamos la muestra con agua destilada. OJO!!! no echar muy fuerte el agua destilada porque nos cargamos toda la muestra y no podremos observar nada.  5. Ponemos de esta manera el portaobjetos para que se escurra todo el agua destilada que aún le puede quedar y lo llevamos al microscop