Práctica 23. Manejo del autoclave

-

  • Lo primero que hicimos fue coger los tubos de Kliger que teníamos en la gradilla. 
  • Lo metimos en una bolsa específica para el autoclave y le pusimos una cinta para cerrarlo.
  • Abrimos y encendemos el autoclave. En un principio estaba a 16ºC y tiene que llegar a los 120ºC. A su vez estaba a 0 atm y tenía que llegar a 1 atm.
  • Una vez que llega a la temperatura y a la presión requerida, empieza el proceso de esterilización y vacío. Este proceso dura entre 15-20 minutos.
  • Suena una alarma para indicarnos que ha finalizado el proceso, pero el autoclave no podrá abrirse hasta que no llegue a 0 atm.


Comentarios

Publicar un comentario

Entradas populares de este blog

Práctica 7. Observación al microscopio de un yogur de fresa con azul de metileno

-
Imagen
MATERIAL A UTILIZAR. - Microscopio. - Papel de filtro. - Mechero de alcohol. - Azul de metileno. - Pinzas. - Asa de siembra. - Portaobjetos. - Yogur de fresa de Danone. - Paralelas. - Agua destilada. - Pipetas Pasteur. PASOS A SEGUIR: 1. Esterilizamos el asa de siembra y el portaobjetos. 2. Cogemos el portaobjetos con las pinzas y con el asa de siembra ponemos un poco de muestra encima. 3. Ponemos la pinza junto con el portaobjetos y la muestra en unas paralelas. Cogemos azul de metileno y con una pipeta Pasteur echamos 1 o 2 gotas en la muestra y lo dejamos secar unos 5 minutos aproximadamente. 4. Una vez han pasado los 5 minutos lavamos la muestra con agua destilada. OJO!!! no echar muy fuerte el agua destilada porque nos cargamos toda la muestra y no podremos observar nada.  5. Ponemos de esta manera el portaobjetos para que se escurra todo el agua destilada que aún le puede quedar y lo llevamos al micro...
Leer más

Práctica 30. Observación de levaduras

-
Imagen
MATERIAL A UTILIZAR: - Agua destilada. - Levadura. - Azúcar. - Microondas. - Vaso de precipitados. - Pipeta Pasteur. - Microscopio. - Porta y cubreobjetos. - Aceite de inmersión. PASOS A SEGUIR: 1. Coger agua destilada y echarla en un vaso de precipitados. Calentarla un poco en el microondas. 2. Partimos una porción muy pequeña de levadura y la echamos. A su vez, también echamos una cucharadita de azúcar. Lo movemos. 3. Con una pipeta Pasteur cogemos una gotita y la echamos en el porta. Ponemos el cubre y lo llevamos al microscopio. 4. Echamos aceite de inmersión y observamos con el objetivo de mayor aumento (100x). 5. Mientras que hacemos esto, dejamos que repose la mezcla del vaso de precipitados. 6. Una vez que ha reposado unos 5-10 minutos, repetimos el mismo proceso anterior y podemos ver como se van dividiendo las levaduras por gemación (en 2).  
Leer más

Práctica 21. Siembra en placa de Petri con medio de cultivo estándar.

-
Imagen
MATERIAL A UTILIZAR: - Papel filtro. - Gradilla. - Placas de Petri con las muestras de la mano. - Asa de siembra. - Mechero. - Mechero de alcohol. - Placas de Petri con medio de cultivo de agar estándar. - Horno calefactor. PASOS A SEGUIR: 1. Encendemos el mechero de alcohol y ponemos las 2 placas de Petri entreabiertas. 2. Cogemos el asa de siembra y la flameamos. 3. Cogemos una muestra de la placa de Petri que contiene muestras de la mano. 4. Hacemos una siembra en estría o en zig-zag, es decir, hay que ir ampliando en la placa de Petri (no hay que apretar porque si  no estropeamos la placa con el medio de cultivo). 5. Una vez hecho, tapamos la placa de Petri, flameamos el asa de siembra y lo llevamos al horno calefactor a 37ºC durante unas 24h aproximadamente. 6. Pudimos ver esto al día siguiente.
Leer más